关于蟾蜍实验的问题.(急!)(回答后追加100分)关于坐骨神经实验：1、蟾蜍毁脑到什么程度可以进行下一步实验?2、何时使用骨钳?3、蟾蜍下肢剥掉皮之后的组织用什么洗?操作者的手和手术器械

Question

关于蟾蜍实验的问题.(急!)(回答后追加100分)
关于坐骨神经实验：
1、蟾蜍毁脑到什么程度可以进行下一步实验?
2、何时使用骨钳?
3、蟾蜍下肢剥掉皮之后的组织用什么洗?操作者的手和手术器械用什么洗?为什么?
4、什么器械可以接触神经?金属手术器械可以碰神经吗?什么操作会损伤神经?其他对神经有害的物质有哪些?
5、操作过程中如何较好的保护神经?
6、制作坐骨神经标本最初的三刀如何剪?
关于心脏传导阻滞实验：
1、打开蟾蜍胸腔分哪几步?
2、打开腹腔应注意避开什么?
3、扎了几根线?如何操作?
4、蛙心兴奋传导顺序是什么?
关于肠系膜微循环的观察：
1、固定标本时要注意什么?
2、如何区分静脉、动脉、微血管?
关于离体蛙心灌流实验：
1、所涉及的血管有哪些?对它们分别进行了什么操作?请画图说明.
2、据图说明穿线、结扎的位置和顺序,何处需要剪膜?何处需要打孔?（请分别就巴木式套管和斯式套管说明.）
3、在巴木式套管向左肝静脉插管时应注意什么?
4、斯式套管插管时应注意什么?
5、加药品的时候应注意什么?如何使药液与心脏中液体混合均匀?
6、更换药液要注意什么?
最好能给我一些直接的答案
因为问者对生物一窍不通
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Answer 1

双毁髓-毁蛙的脑和脊髓
·毁髓针刺入部位必须准确；毁髓针垂直刺入枕骨后凹皮肤即可,不要刺得太深.
·毁脑髓时,针体与蛙颅顶平行刺入颅腔；毁脊髓时,针体与脊柱平行插入椎管.
·脑脊髓彻底毁坏的标志：四肢(尤其下肢)肌紧张消失,并常伴有尿失禁情况.如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动状态,则必须重新毁髓.
3、制备脊蛙
·待蛙苏醒后再进行蛙体实验.
·冬季应先将蛙放在30℃～40℃的温水中浸浴若干分钟,待其较活跃时再进行实验；实验过程中用温水清洗蛙体上的残余硫酸.
4、脊髓反射和反射时的测定
·每次酸刺激前,蛙体须处于安静状态.
·每次反射活动出现后,用清水洗去蛙体上残余硫酸,再用纱布拭去蛙体上水滴.
·反射时的测定应重复三次实验,取其平均值,即为其反射时；每次实验的刺激强度(如：硫酸浓度、纸片大小)和部位应保持一致.
5、反射弧的分析
·用眼科剪在踝关节处剪一环形切口时候,勿损伤血管.
·右后肢最长趾的皮肤必须除干净(为什么).
·每次刺激后用清水洗去蛙体上的残余硫酸,再用纱布擦拭去蛙体上的水滴(为什么).
·坐骨神经下置麻药棉球后,应立即记时并进行屈反射实验.
·屈反射不再出现时,立即进行搔扒反射实验.
·在屈反射(或搔扒反射)仍存在时,应每隔1min重复1次酸刺激.
·每次酸刺激后用水清洗蛙体时,勿使水浸到麻药棉球.
6、蛙心搏起源的分析
·实验过程中常用任氏液浸润心脏,以保持心脏生理活性.
·用玻璃针拨动心尖,暴露心脏背面.
·不同温度刺激心脏某一部位时,切勿触及心脏其他部位,以免影响实验结果.
·斯氏结扎部位必须准确.
·每次读取数据时,重复3次,取平均值.
7、观察肠系膜微循环
·麻醉蛙时,注射器针头不要刺穿下颌部皮肤.
·将肠系膜展开过孔时,不可牵拉太紧,以免撕破血管或阻断血流.
·经常用任氏液湿润肠系膜,以免干燥,影响血液循环.
·滴加药物,血管及血流出现变化后,立即用任氏液润洗肠系膜.
8、蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
在制备标本过程中：
·经常用任氏液浸润标本.
·不能用金属器皿触碰神经干.
·不得让动物的皮肤分泌物、血液等浸染神经和肌肉.
·用任氏液清洗手及解剖器具上的污物.